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超氧化物歧化酶（SOD）测试盒（比色法）(NBT法)
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超氧化物歧化酶（Superoxide Dismutase, SOD）试剂盒说明书（NBT法）
微量法 100管/96样
正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义：
SOD（EC 1.15.1.1）广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中，催化超氧化物阴离子发生岐化作用，生成H2O2和O2。SOD不仅是超氧化物阴离子清除酶，也是H2O2主要生成酶，在生物抗氧化系统中具有重要作用。
测定原理：
通过黄嘌呤及黄嘌呤氧化酶反应系统产生超氧阴离子(O2-.)，O2-.可还原氮蓝四唑生成蓝色甲臜，后者在560nm处有吸收；SOD可清除O2-.，从而抑制了甲臜的形成；反应液蓝色越深，说明SOD活性愈低，反之活性越高。
需自备的仪器和用品：
酶标仪、离心机、移液器、96孔板、研钵、冰和蒸馏水
试剂的组成和配制：
提取液：液体100mL×1瓶，4℃保存；
试剂一：液体5mL×1瓶，4℃保存；
试剂二：液体200μL×1支，4℃保存；
试剂三：液体4mL×1瓶，4℃保存；
试剂四：粉剂×2瓶，4℃保存。
粗酶液提取：
1、细菌、细胞或组织样品的制备：
细菌或培养细胞：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照细菌或细胞数量（104个）：提取液体积（mL）为500~1000：1的比例（建议500 万细菌或细胞加入1mL提取液），超声波破碎细菌或细胞（冰浴，功率20％或200W，超声3s，间隔10s，重复30次）；8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。
组织：按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1mL提取液），进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。
2、血清（浆）样品：直接检测。
测定步骤：
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试剂名称（μL） |
测定管 |
对照管 |
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试剂一 |
45 |
45 |
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试剂二 |
2 |
2 |
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样本 |
18 |
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蒸馏水 |
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18 |
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试剂三 |
35 |
35 |
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试剂四 |
100 |
100 |
充分混匀，室温静置30min后，560nm处测定各管吸光值A。
注意事项：
1、试剂二为酶，不可冷冻，使用时在冰上放置。
2、对照管只需要做一管。
3、若对照管吸光值大于1，建议将试剂二用蒸馏水稀释7倍后使用（10μL试剂二原液+60μL蒸馏水）。
4、SOD为什么有的样本测定管大于对照管，对照管数值在什么范围？
对照管的范围是0.4-1。对照管吸光值过低可能是（1）试剂二或试剂四没有现配现用；（2)没有按顺序加试剂；（3）反应时间不够，可以延长反应时间（反应时间30min可以延长到40min）。对照管吸光值过高可能是试剂二未按操作说明书稀释相应倍数。
若出现测定管大于对照管，可能是样本中杂质的影响太大，为了降低杂质的影响一般将样本提取上清液用蒸馏水或提取液稀释10倍后再测，通常可以使测定正常。计算公式中乘以相应稀释倍数。
SOD活性计算：
1、抑制百分率的计算
抑制百分率＝(A对照管－A测定管) ÷A对照管× 100%
尽量使样本的抑制百分率在10-90%范围内。如果计算出来的抑制百分率小于10%或大于90%，则通常需要调整加样量后重新测定。如果测定出来的抑制百分率偏高，则需将样本用提取液适当稀释；如果测定出来的抑制百分率偏低，则需重新准备浓度比较高的待测样本。
2、SOD酶活性单位：在上述黄嘌呤氧化酶藕联反应体系中抑制百分率为50%时，反应体系中的SOD酶活力定义为一个酶活力单位(U/mL)。
3、SOD酶活性计算：
（1）血清（浆）SOD活性(U/mL)=[抑制百分率÷(1－抑制百分率)×V反总]÷V样
=11.11×抑制百分率÷(1－抑制百分率)
（2）组织、细菌或培养细胞SOD活力计算：
a.按样本蛋白浓度计算
SOD活性(U/mg prot)=[抑制百分率÷(1－抑制百分率)×V反总]÷(V样×Cpr)
=11.11×抑制百分率÷(1－抑制百分率)÷Cpr
需要另外测定，建议使用本公司BCA蛋白质含量测定试剂盒。
b.按样本鲜重计算
SOD活性(U/g 鲜重)=[抑制百分率÷(1－抑制百分率)×V反总]÷(W ×V样÷V样总)
=11.11×抑制百分率÷(1－抑制百分率)÷W
c.按细菌或细胞个数计算
SOD活力(U/104 cell)=[抑制百分率÷(1－抑制百分率) ×V反总]÷(500×V样÷V样总)
=0.022×抑制百分率÷(1－抑制百分率)
V反总：反应体系总体积，0.2mL；V样：加入反应体系中样本体积，0.018mL；V样总：加入提取液体积，1 mL；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL ；W：样本质量，g；500：细胞或细菌总数，500万。
产品说明书