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单宁酶（TAN）测试盒（比色法）
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单宁酶（Tannase，TAN）试剂盒说明书
微量法100管/48样
正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义
单宁酶全称是单宁酯酰水解酶(Tannase，EC 3.1.1.20)，它可以水解没食子酸单宁中的酯键和缩酚羧键，生成没食子酸和葡萄糖。
测定原理
使用抗氧化剂没食子酸丙酯（PG）作为单宁酶酶促反应的底物，在270nn下测定底物PG反应前后的光密度变化,计算单宁酶酶活力。
需自备的的仪器和用品
紫外分光光度计/酶标仪、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、微量石英比色皿/96孔UV板、研钵、冰、蒸馏水
试剂的组成和配制
试剂一：液体100mL×2瓶，4℃保存；
试剂二：粉剂×1支，4℃保存；临用前每支加入6mL试剂一，充分溶解后备用；用不完的试剂4℃保存；
粗酶液提取
按照组织质量（g）：试剂一体积(mL)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1mL试剂一），进行冰浴匀浆。10000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。
液体样本：直接取上清测定。
测定步骤
1、分光光度计预热30min以上，调节波长到270 nm，蒸馏水调零。
2、加样表
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试剂名称（μL） |
对照管 |
测定管 |
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95℃水浴5min后灭活的粗酶液 |
50 |
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粗酶液 |
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50 |
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试剂二 |
50 |
50 |
混匀，40℃准确保温10 min后，置95℃水浴中10 min（盖紧，防止水分散失），冷却
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试剂一 |
900 |
900 |
混匀，取200uL至微量石英比色皿或96孔UV板中，270nm处读取各管吸光值。计算ΔA=A对照-A测定。每个测定管需设个一个对照管。
注意：
TAN活力单位的计算
a.用微量石英比色皿测定的计算公式如下
标准条件下测定回归方程为y = 0.0058x + 0.0044，R2 = 0.9994；x为PG含量（µmol/L），y为吸光值。
单位的定义：40℃下每毫升粗酶液每分钟水解减少0.01µmol底物PG所需要的酶量定义为一个酶活单位。
TAN活性(µmol/min/mL)=(ΔA-0.0044）÷0.0058÷1000×V反总÷0.01÷V样÷T
=34.48×( ΔA-0.0044）
2、按照蛋白浓度计算
单位的定义：40℃下每毫克蛋白每分钟水解减少0.01µmol底物PG所需要的酶量定义为一个酶活单位(U)。
TAN活性((µmol/min/mg prot)=(ΔA-0.0044）÷0.0058÷1000×V反总÷0.01÷(V样×Cpr)÷T
=34.48×(ΔA-0.0044）÷Cpr
3、按照样本鲜重计算
单位的定义：40℃下每克样品每分钟水解减少0.01µmol底物PG所需要的酶量定义为一个酶活单位(U)。
TAN活性(µmol/min/g 鲜重)=(ΔA-0.0044）÷0.0058÷1000×V反总÷0.01÷(V样÷V样总×W)÷T
=34.48×(ΔA-0.0044）÷W
V反总：反应体系总体积，1mL； V样：加入样本体积，0.05mL；V样总：加入提取液体积，1 mL；T：反应时间，10min；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本质量，g。
b.用96孔板测定的计算公式如下
标准条件下测定回归方程为y = 0.0029x + 0.0044，R2 = 0.9994；x为PG含量（µmol/L），y为吸光值。
1、按样本体积计算
单位的定义：40℃下每毫升粗酶液每分钟水解减少0.01µmol底物PG所需要的酶量定义为一个酶活单位(U)。
TAN活性(µmol/min/mL)=(ΔA-0.0044）÷0.0029÷1000×V反总÷0.01÷V样÷T
=68.97×( ΔA-0.0044）
2、按照蛋白浓度计算
单位的定义：40℃下每毫克蛋白每分钟水解减少1µmol底物PG所需要的酶量定义为一个酶活单位(U)。
TAN活性(µmol/min/mg prot)=(ΔA-0.0044）÷0.0029÷1000×V反总÷0.01÷(V样×Cpr)÷T
=68.97×( ΔA-0.0044）÷Cpr
3、按照样本鲜重计算
单位的定义：40℃下每克样品每分钟水解减少0.01µmol底物PG所需要的酶量定义为一个酶活单位(U)。
TAN活性(µmol/min/g 鲜重)=(ΔA-0.0044）÷0.0029÷1000×V反总÷0.01÷(V样÷V样总×W)÷T
=68.97×( ΔA-0.0044）÷W
V反总：反应体系总体积，1mL； V样：加入样本体积，0.05mL；V样总：加入提取液体积，1 mL；T：反应时间，10min；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本质量，g。
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